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【免疫檢驗(yàn)】免疫透射比濁法試劑在全自動(dòng)生化分析儀上的應(yīng)用進(jìn)展及影響因素分析
發(fā)布者:CN    發(fā)布于:2015-05-27

編輯:錢亞如

隨著免疫學(xué)技術(shù)及全自動(dòng)生化分析儀技術(shù)的日趨完善,免疫透射比濁法試劑在全自動(dòng)生化儀上應(yīng)用逐漸成熟。由于該方法操作簡便、自動(dòng)化和高穩(wěn)定性使其成為目前臨床生化檢測中最常用的技術(shù)之一。 大量的以往依靠專用免疫學(xué)檢測儀器執(zhí)行的檢測項(xiàng)目也逐步轉(zhuǎn)移到全自動(dòng)生化儀上完成。為幫助基層試驗(yàn)室操作者對相關(guān)知識(shí)的了解,并正確開展相關(guān)檢測,特對免疫透射比濁法原理、主要影響因素和應(yīng)用注意事項(xiàng)等知識(shí)進(jìn)行簡單介紹。

1.免疫透射比濁法原理

免疫透射比濁法的原理是:可溶性抗原抗體在液相中特異結(jié)合產(chǎn)生一定大小的復(fù)合物,當(dāng)一束光線通過這些復(fù)合物時(shí),在1800角(即在直射角度)上測定光透射強(qiáng)度,由于復(fù)合物的散射和遮擋,致使透光度減弱(見圖1)。在一定條件下透射光減弱的程度(吸光度的增加)和液相中復(fù)合物的量成比例從而得出被測溶液中抗原或抗體的濃度[1]。

 

1. 免疫透射比濁法原理示意圖

2.免疫透射比濁法改進(jìn)

    長期以來,人們普遍認(rèn)為免疫透射比濁法的敏感性不夠理想,檢測范圍不夠?qū)挘蚴敲庖邚?fù)合物顆粒太小,阻擋不了光線的通過;或是免疫復(fù)合物的數(shù)量太少,其濁度變化對光通量的透過影響不大,特別是在低濃度時(shí)更加明顯[2]

近年來,發(fā)展起來的膠乳增強(qiáng)免疫透射比濁法(Particle Enhanced Turbidimetric Assay簡稱:PETIA Latex Enhanced Turbidimetry)大大緩解了這一難題[3-5]。該方法是將抗體連接在微小的膠乳顆粒(粒子直徑從20nm4μm)上,當(dāng)抗原抗體相結(jié)合時(shí)便形成了抗原-抗體-膠乳顆粒復(fù)合物,檢測的靈敏度得到了極大的改善,檢測靈敏度最高可達(dá)到1.0ng/ml,可以作為多克隆抗體和單克隆抗體的載體。納米級粒子的推出解決了對單克隆抗體結(jié)合的能力不強(qiáng),臨床檢測的線性范圍窄,干擾因素多,實(shí)驗(yàn)穩(wěn)定性差等問題,大大促進(jìn)了免疫比濁法在臨床上的廣泛應(yīng)用。

特別是雙膠乳顆粒連接的雙抗體技術(shù)DuREL,dual radius latex enhanced technology最近也得以應(yīng)用于免疫透射比濁法,其中大膠乳顆粒包被了高反應(yīng)性抗體,以提高分析敏感性;小膠乳顆粒包被了低反應(yīng)性抗體,以此來擴(kuò)展測量范圍,使得檢測敏感性及檢測范圍大大改善[2]。以反應(yīng)蛋白( CRP) 試劑盒為例,第1代試劑為傳統(tǒng)的免疫透射比濁法,其檢測范圍為5250 mg /L; 第代試劑采用PETIA法制備的超敏CRP,其檢測靈敏度可達(dá)0.3mg/L;而第代試劑則為雙膠乳顆粒連接的雙抗體技術(shù)(全程CRP),其檢測范圍為0.3350 mg /L,分析敏感性與測量范圍均大大增加。

PETIA檢測試劑所采用的乳膠顆粒多為惰性微球、羧基化微球及氨基化微球。表面修飾的膠乳粒子與抗體的結(jié)合是通過其表面的羧基或氨基與抗體的氨基端共價(jià)結(jié)合,在微球與抗體之間有一個(gè)橋聯(lián)化學(xué)臂,降低了位阻效應(yīng),不僅提高了抗體的結(jié)合率,而且還為抗體提供合適的三維空間立體結(jié)構(gòu),有效地保護(hù)了抗體與抗原結(jié)合的活性區(qū)域。國外已有多家公司提供納米級表面修飾的微球粒子原料,并廣泛應(yīng)用于PETIA

3. 免疫透射比濁法檢測的主要影響因素

     免疫比濁法檢測都是通過抗原抗體的結(jié)合來測定樣品中待測物質(zhì)的濃度的,那其必然受到抗體(或抗原)、緩沖系統(tǒng)和波長的影響。下面就這些主要因素進(jìn)行介紹。

3.1 抗體(或抗原)的質(zhì)量

    免疫濁度測定對抗體的質(zhì)量要求較高,抗體要特異性強(qiáng),即只與相應(yīng)抗原反應(yīng),與其他抗原絕無交叉反應(yīng)。且效價(jià)高,大于1:20,親和力強(qiáng),這樣可加快抗原、抗體反應(yīng),使抗原、抗體復(fù)合物牢固不易解離[6]。因此,可以說擁有的抗

體質(zhì)量是決定比濁結(jié)果的重要原因?乖涂贵w的制備,無論是使用抗原作為試劑檢測待測標(biāo)本中的特異性抗體,如測定抗鏈球菌溶血素 “O”;還是使用抗體作為試劑檢測待測標(biāo)本中的抗原,如各種特定蛋白,都要求它們達(dá)到一定的純度,具有特異性和反應(yīng)的專一性。單克隆抗體的特異性顯然遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于多克隆抗體,基因工程制備的第三代抗體,又比通過生物學(xué)方法制備的抗體要好[7]。

3.2 抗原抗體的比例

在免疫濁度測定中,免疫復(fù)合物微粒的大小與反應(yīng)體系中抗原、抗體的比例關(guān)系密切,抗原、抗體的比例是濁度形成的關(guān)鍵因素。當(dāng)抗原、抗體比例恰當(dāng)時(shí),二者全部結(jié)合,既無抗原過剩,又無抗體過剩,這時(shí)免疫復(fù)合物的形成和解離達(dá)到平衡。當(dāng)抗原過量時(shí),形成的免疫復(fù)合物分子小,而且會(huì)發(fā)生再解離,使?jié)岫确炊陆,光散射減少,形成高劑量鉤狀效應(yīng)圖。當(dāng)抗體過量時(shí),復(fù)合物的形成隨著抗原量的增加而增加,當(dāng)抗原、抗體比例達(dá)到最佳時(shí)免疫復(fù)合物的量達(dá)到高峰,這就是經(jīng)典的Heidelberger曲線理論圖(見圖2)。為此,免疫比濁法的基本原則就是在反應(yīng)體系中保持抗體過量,如抗原過量則引起測量失敗。

2. Heidelberger曲線理論圖

3.3 緩沖系統(tǒng)

    1、PH值?乖贵w一般需要相對溫和PHpH6.5—8.5時(shí)抗原、抗體親和力大,超過這個(gè)范圍不易形成免疫型復(fù)合物,甚至可引起免疫復(fù)合物解離;pH太高或太低易引起蛋白質(zhì)變性,形成偽濁度。

    2、離子強(qiáng)度。電解質(zhì)的性質(zhì)和強(qiáng)度影響免疫復(fù)合物的形成和穩(wěn)定性:離子濃度可以直接影響AgAb的結(jié)合。在一定范圍內(nèi),離子強(qiáng)度大,免疫復(fù)合物形成快。但離子強(qiáng)度過高可引起蛋白質(zhì)鹽析,形成偽濁度。離子的種類也可影響復(fù)合物的形成,由慢到快可按順序排列為:SCN-c1O4、ClF、SO2-、H2PO4-、HPO42-。因此,常用磷酸鹽緩沖液作為免疫濁度測定的反應(yīng)液。

    3、入射光波長。無論是透射比濁還是散射比濁,入射光波長均影響濁度測定的靈敏度。若血清成分能吸收部分入射光,透射比濁法會(huì)誤測為抗原的高濃度,散射比濁法會(huì)誤測為抗原的低濃度。因此濁度測定的波長選擇很重要,以江蘇英諾華醫(yī)療技術(shù)有限公司生產(chǎn)的D系列全自動(dòng)生化儀為例,普通免疫比濁法的波長一般選擇340nm;而膠乳增強(qiáng)免疫比濁法的波長根據(jù)抗體交聯(lián)的膠乳大小選擇不同波長,通常會(huì)選擇578nm、620nm670nm

    4、偽濁度。指非待測抗原、抗體特異結(jié)合生成的免疫復(fù)合物形成的濁度,可導(dǎo)致抗原檢測結(jié)果假性升高。偽濁度形成的原因有標(biāo)本混濁、高血脂、標(biāo)本長期保存或反復(fù)凍融,處理不當(dāng);試劑中抗體效價(jià)低于1:20可導(dǎo)致偽濁度增加;抗血清含有交叉反應(yīng)性抗體,聚乙二醇(PEG)濃度過高引起血清中雜蛋白的非特異性共沉淀,濁度增加[8];試劑污染(如細(xì)菌)和變質(zhì);器材不夠清潔,尤其是比色杯、塵埃污染等;其他因素還有緩沖液的離子類型與強(qiáng)度、pH值及反應(yīng)溫度等都會(huì)對濁度形成影響。

4.免疫透射比濁法的特定和臨床應(yīng)用

    近年來,免疫透射比濁法自身改進(jìn)使其在生化分析儀上得到廣泛的應(yīng)用。其主要的優(yōu)點(diǎn)有一下幾個(gè):

     1、抗干擾能力強(qiáng):免疫復(fù)合物、免疫球蛋白聚集、脂蛋白以及膽紅素或游離血紅蛋白等都可對光散射或光透射分析結(jié)果產(chǎn)生干擾。而免疫透射比濁法所采用的全自動(dòng)生化分析儀可聯(lián)合應(yīng)用雙波長檢測,輔助檢測點(diǎn)的設(shè)置,樣本自動(dòng)稀釋,與樣本空白對照檢測,有助于最小化這些因素對檢測的影響。因此,免疫透射比濁法的抗干擾能力較強(qiáng)[2]

     2、操作方便:可應(yīng)用于全自動(dòng)生化儀。自動(dòng)化程度高,操作簡便,儀器技術(shù)成熟,穩(wěn)定性好,檢測結(jié)果10min內(nèi)得到。

     3、成本低,易普及:免疫透射比濁法的試劑相對成本較低,且試劑開啟后穩(wěn)定,校準(zhǔn)周期較長,故總體消耗成本較低。

     綜上所述,,免疫透射比濁法具有更優(yōu)的精密度、相似的分析敏感性和檢測范圍、良好的相關(guān)性、較小的系統(tǒng)誤差、較強(qiáng)的抗干擾能力,且更加實(shí)用和便利,、適合各種有全自動(dòng)生化分析儀的醫(yī)院,完全符合實(shí)驗(yàn)室常規(guī)檢測的要求。因此,免疫透射比濁法在臨床實(shí)驗(yàn)室中具有廣泛的應(yīng)用價(jià)值與優(yōu)勢[9]

參考文獻(xiàn):

[1] 康熙雄,張果,王雅杰,周亞莉.免疫比濁分析法[J]. 中華醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)雜志,2008.31.(9):1076-1080.

[2] 彭鳳,于嘉屏,應(yīng)春妹免疫透射比濁測定技術(shù)的進(jìn)展和分析特性[J]. 檢驗(yàn)醫(yī)學(xué),2012.27.(4):252-256.

[3] Al-Turkmani MR,Law T,Kellogg MD. Performance evaluation of a particle-enhanced turbidimetric cystatin C assay on the Hitachi 917 analyzerJ].Clin Chim Acta2008,398( 1-2) : 75-77

[4] Tugirimana PLHolderbeke AL,Kint JA,et al. A new turbidimetric method for assaying serum C-reactive protein based on phosphocholine interactionJ]. Clin Chem Lab Med,2009,47( 11) : 1417-1422

[5] Hansson LO,Grubb A,Lidén A,et al. Performance evaluation of a turbidimetric cystatin C assay on different high-throughput platformsJ]. Scand J Clin Lab Invest,2010,70( 5) : 347-353

[6] Wi∞BLThe quantitation and fractionation of proteins incerebrospinal fluidAm J Med Technol19824882l-827

[7] Verlssima DMdo Vale MSMethodolo∞for assessment of apical and coronal leakage of endodonfic filling materialsa critical reviewJ Oral Sci2006,4893-98

[8] Piflol M,Sales M,Costa M,et a1FedericiEvaluation of a nw turbidimetric assay for von Willebrand factor activity useful in the general screening of von Willebrand diseaseHaematologics,200792712-713

[9] 孫立芳,趙靜.淺談免疫比濁法技術(shù)優(yōu)勢[J]中國敏康醫(yī)學(xué),2012.24.(23):2870-2872.

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